在我們實驗中，養細胞是所有實驗的基礎，腫瘤細胞培養過程中，總會遇到這樣那樣的麻煩，以下幾種情況，你是否遇到，如何解決，大師兄給你指明一二三。

如何判斷細胞污染了？

狀態 1： 細胞培養液變渾濁了，經常見到是米湯樣，黃色液體，一般認為細菌污染。

 

狀態 2：細胞培養基內含有能動的小黑點，一般認為是黑膠蟲。

 

狀態 3：胞培養基清亮，但是能看到飄在培養液帶有毛毛的白色的菌狀物質，有可能就是真菌感染。

 

策略：細胞污染了就直接扔了，還得把培養箱用酒精棉球擦干凈，并用紫外照射半小時，防止再次污染。同時建議細胞培養時，在培養基中加入青鏈霉素 (尤其是初學者)

細胞培養過程中，細胞周圍包括細胞上有很多小黑點，怎么辦?

 

策略 1：用胰酶消化下來后，低速短時間離心，不同實驗室不一樣，如果平時是 1 000 轉 5 min 的話，就可以改為 700 轉 3 min，用新的培養瓶培養細胞，細胞收集是少一點，但是一般都能干凈很多。多傳幾代就好多了。

策略 2：如果多次嘗試之后還是不干凈，就懷疑是否存在支原體污染了，用抗支原體藥就 OK 了。一般用上 3～5 天，細胞就干干凈凈了。

細胞培養過程中，發現貼壁細胞表面沾了很多死細胞，傳代過程中一直存在怎么破？

 

有一招屢試不爽，那就是用 PBS 洗兩遍之后，加胰酶進去，晃一晃，迅速將胰酶倒出，再用 PBS 洗一下，再加胰酶正常消化。死細胞由于粘附能力很弱，第一次加胰酶進去以后會掉下來，第二次加胰酶下來的細胞才是活性比較強的細胞。整完一次之后，再次傳代方法同上，一般 2～3 次之后，細胞就完好如初了。

細胞胞質疏松，狀態不好，養不起來，怎么辦?

 

策略 1：一般情況下，從血清下手就行，要么換好血清，要么提高血清濃度，血清濃度提高到 15%～20% 培養 48 h，換成正常 10% 的濃度，用高濃度的血清培養時間過長對細胞有毒性。

策略 2：血清下手之后可以同時采取提高細胞密度的方法，從培養瓶換到六孔板，12 孔板等，細胞密度大，細胞分泌的細胞因子多，腫瘤細胞通過旁分泌途徑促進細胞生長。

預防策略：細胞胞質疏松，老化的原因在于細胞傳代次數比較多，胰酶消化時間太長，這時候，一定要控制細胞傳代次數，注意胰酶消化時間，胰酶消化時間過長，容易導致細胞狀態不佳以及胞質疏松。有一招，元元沒試過，可以嘗試，將細胞凍起來，過段時間復蘇，細胞會長得比較好。

長途運輸過來裝滿培養液的細胞如何處理?

很多人都會遇到從其他地方買來細胞或者快遞運來細胞，裝滿培養基的培養瓶的細胞怎么處理的問題。

第 1 步：先放 37℃ 培養箱放置 4 小時，這樣細胞在通過長途跋涉以后得以穩定，觀察細胞狀態。

第 2 步：將新鮮培養基和舊的培養基 1:1 稀釋，如果細胞狀態不好，可以將血清濃度提到 15%，否則正常培養，這樣有一個過渡期，不至于細胞換血清之后狀態不佳，15% 的血清培養 48 h 之后換成正常濃度培養。